Youtube.com

Jumat, 23 Januari 2015

MACAM MACAM KROMATOGRAFI

Macam-Macam Kromatografi

1.      Ion Exchanger Cromatography
Metode yang paling populer untuk pemurnian protein dan molekul lainnya yang dikenakan adalah kromatografi pertukaran ion. Dalam kromatografi penukar kation molekul bermuatan positif tertarik pada dukungan solid bermuatan negatif. Sebaliknya, dalam kromatografi pertukaran anion, molekul bermuatan negatif tertarik pada dukungan solid bermuatan positif.
·         Mekanisme
Untuk mengoptimalkan mengikat semua molekul bermuatan, fase gerak umumnya rendah konduktivitas menengah (yaitu, rendah untuk konsentrasi garam menengah) solusi. Adsorpsi molekul untuk dukungan yang solid didorong oleh interaksi ionik antara kelompok ionik malah dibebankan dalam molekul sampel dan dalam ligan fungsional pada mendukung. Kekuatan interaksi ditentukan oleh jumlah dan lokasi dari biaya pada molekul dan pada kelompok fungsional. Dengan meningkatkan konsentrasi garam (umumnya dengan menggunakan gradien garam linear) molekul dengan interaksi ionik terlemah mulai terelusi dari kolom pertama. Molekul yang memiliki interaksi ionik kuat memerlukan konsentrasi garam yang lebih tinggi dan terelusi kemudian dalam gradien. Kapasitas pengikatan resin pertukaran ion umumnya cukup tinggi. Ini adalah sangat penting dalam kromatografi skala proses, tetapi tidak penting untuk pemisahan skala analitis.
·         Buffer pH
Sebagai aturan, pH buffer fase gerak harus antara pI ( titik isoelektrik ) atau pKa ( asam disosiasi konstan ) dari molekul bermuatan dan pKa dari kelompok dibebankan pada dukungan solid. Misalnya, dalam kromatografi penukar kation, menggunakan kelompok fungsional pada dukungan solid dengan pKa 1,2, sampel molekul dengan pI 8,2 dapat dijalankan dalam buffer fase gerak pH 6,0. Dalam kromatografi pertukaran anion molekul dengan pI 6,8 dapat dijalankan dalam buffer fase mobile pada pH 8,0 ketika pKa dari dukungan yang solid adalah 10.3 (www.separations.us.tosohbioscience.com).
http://chemwiki.ucdavis.edu/@api/deki/files/223/ion_exch.jpg?size=bestfit&width=678&height=353&revision=1http://jasakalibrasi.net/wp-content/uploads/2013/07/kromatografi.jpg 

2.      Hidrophobic Interaction Chromatography
Pemisahan menggunakan HIC didasarkan pada interaksi reversibel antara protein dan ligan hidrofobik terikat pada matriks kromatografi. Asam amino hidrofobik protein dan peptida biasanya terletak jauh dari permukaan molekul. Namun, banyak biomolekul memiliki beberapa kelompok hidrofobik yang cukup terkena memungkinkan interaksi dengan ligan hidrofobik pada media. Dibandingkan dengan kromatografi fase terbalik, kepadatan ligan pada matriks jauh lebih rendah dan memungkinkan kondisi elusi ringan, membantu untuk melestarikan aktivitas biologis. HIC sangat cocok untuk sampel diendapkan dengan amonium sulfat atau dielusi dalam konsentrasi garam yang tinggi karena tinggi buffer kekuatan ion meningkatkan interaksi hidrofobik.
Interaksi ditingkatkan oleh buffer dengan kekuatan ion yang tinggi, yang membuat HIC langkah pemurnian baik setelah pengendapan amonium sulfat atau setelah elusi garam tinggi selama kromatografi penukar ion (IEX). HIC sangat cocok untuk menangkap atau langkah-langkah perantara dalam skema pemurnian.
Selama HIC, komponen sampel mengikat kolom di tinggi penyangga kekuatan ion, biasanya 1 sampai 2 M amonium sulfat atau 3 M NaCl. Konsentrasi tinggi garam, terutama amonium sulfat, dapat memicu protein. Oleh karena itu, periksa kelarutan protein target dalam kondisi yang mengikat untuk digunakan. Elusi biasanya dilakukan dengan menurunkan konsentrasi garam, bertahap atau menggunakan gradien.
Protein dalam larutan air memiliki berbagai residu permukaan terkena pelarut untuk derajat yang berbeda, tergantung pada struktur protein. Residu ini dapat hidrofilik, misalnya mereka dapat membawa muatan, atau mereka dapat hidrofobik, seperti dalam alanin asam amino fenil, tyrosine dan tryptophan. Kelompok hidrofobik akan lebih memilih untuk mengubur diri secara internal dalam struktur 3D protein tetapi beberapa akan terkena. Garam dapat digunakan untuk mengendapkan protein atau mengkristal keluar dari solusi - menyebabkan protein untuk diri-asosiasi. Para ilmuwan telah menyadari, sejak Hofmeister, bahwa garam yang berbeda memainkan peran penting dalam diri-asosiasi atau asosiasi dengan permukaan hidrofobik.
Fenomena ini membentuk dasar untuk kromatografi interaksi hidrofobik (HIC). Sebuah matriks kromatografi mengandung gugus hidrofobik, mengikat protein dari larutan air untuk luasan yang berbeda, tergantung pada struktur protein dan berbagai faktor dikontrol termasuk konsentrasi garam, pH, suhu dan pelarut organik seperti yang diilustrasikan pada gambar di bawah ini.
HIC sesuai dengan semua tahapan proses pemurnian. Contoh aplikasi termasuk menangkap hasil tinggi, polishing antibodi monoklonal, menghilangkan spesies terpotong dari bentuk full-length, memisahkan aktif dari bentuk tidak aktif, dan pembersihan virus.
http://www.gelifesciences.com/file_source/GELS/Products%20%28Technologies%29/Technology%20Insights/Chromatography/Hydrophobic%20Interaction%20Chromatography%20%28HIC%29/2%20HIC.jpg
Sebuah ilustrasi elusi 4 protein dengan model struktur 3D yang berbeda mereka dari kolom HIC, menggunakan turun gradien konsentrasi garam. Warna kuning menunjukkan residu hidrofobik.
Alur kerja yang disukai tergantung pada aplikasi; terutama, apakah pemurnian akan ditingkatkan dalam proses industri. Untuk banyak aplikasi dalam penelitian, pemilihan media ditentukan hanya dengan kemurnian diperlukan. Pilihan sukses menengah tergantung pada menemukan orang yang tepat mengikat selektivitas dengan recovery produk yang baik, sedangkan kebutuhan untuk metode optimasi dan karakterisasi umumnya kurang dari untuk sebuah proses yang akan ditingkatkan dan digunakan untuk produksi industri biasa. Alur kerja dimulai dengan cara yang sama untuk kedua jenis aplikasi, seperti yang diilustrasikan pada gambar di bawah.
http://www.gelifesciences.com/file_source/GELS/Products%20%28Technologies%29/Technology%20Insights/Chromatography/Hydrophobic%20Interaction%20Chromatography%20%28HIC%29/HIC%20workflow.jpg
Workflow untuk pemilihan HIC menengah dan studi lebih lanjut kondisi mengikat dan elusi.
GE Healthcare memperkenalkan media pertama HIC komersial pada tahun 1977 dan sekarang menawarkan salah satu rentang terluas media HIC di pasar, yang meliputi laboratorium yang paling umum dan aplikasi industri. Selain berbagai produk HIC, interaksi hidrofobik sering memainkan peran dalam penggunaan media kromatografi multimodal. Media ini sering digambarkan sebagai penukar ion garam-toleran, atau penukar ion menawarkan selektivitas yang unik. GE Healthcare menawarkan Capto MMC dan Capto mematuhi di kelas ini.
Keluarga Media Bioproses kami dikembangkan dan didukung untuk pembuatan skala besar biopharmaceuticals. Dukungan ini termasuk metode divalidasi manufaktur, memasok media jangka panjang aman, penanganan yang aman dan mudah, dan Dukungan Regulasi Files (RSF) untuk membantu proses validasi dan pengiriman ke pihak berwenang. Selain itu, Cepat Trak Training & Education menyediakan tingkat tinggi, pelatihan hands-on untuk semua aspek kunci dari pengembangan bioproses dan manufaktur.
·         Menangkap ke Polishing
Untuk mencapai potensi pemisahan penuh HIC dalam berbagai aplikasi menuntut berbagai media dengan hydrophobicities berbeda dan sifat operasional. Hal ini dicapai dengan memvariasikan matriks dasar dan sifat kimia dari ligan. Khusus untuk proses hilir industri, ukuran manik yang berbeda dapat dituntut oleh aplikasi, khususnya untuk menangkap atau polishing.
Manik-ukuran pilihan menganggap kedua kekuatan menyelesaikan yang diperlukan dan penurunan tekanan atas tempat tidur - dipengaruhi oleh viskositas sampel dan sering dibatasi oleh spesifikasi peralatan dalam aplikasi skala besar. Akhirnya, kisaran meliputi media yang dengan struktur manik-manik yang lebih terbuka cocok untuk protein yang sangat besar, seperti Octyl Sepharose 4 Fast Flow dan Butyl Sepharose 4 Fast Flow. Angka ini menunjukkan hasil dari penelitian yang didasarkan pada 100 percobaan di mana enam protein model dengan ukuran berbeda, hidrofobik dan biaya dielusi dalam sama ammonium sulfat gradien.
http://www.gelifesciences.com/file_source/GELS/Products%20%28Technologies%29/Technology%20Insights/Chromatography/Hydrophobic%20Interaction%20Chromatography%20%28HIC%29/8%20HIC.jpg
Hidrofobisitas peta media HIC. Berdasarkan studi elusi dari enam protein Model: ovalbumin, a-chymotrypsinogen, ribonuklease, laktoferin, lisozim, a-amilase.
·         Pilih Media Tepat
 Pemurnian protein dapat dibagi menjadi capture, pemurnian intermediate dan polishing, tergantung pada tujuan dan sifat tantangan. HIC dapat digunakan pada setiap tahap ini dan media Capto menawarkan berbagai kondisi operasi. Memilih media yang tepat sangat tergantung pada mendapatkan selektivitas mengikat tepat.
  1. Secara umum, menggunakan media Capto untuk produktivitas optimal dalam menangkap atau langkah-langkah perantara. Rata-rata ukuran manik 75 m
  2. Gunakan media yang Sepharose Fast Flow untuk menangkap pada arus hingga 300 cm / jam dan ketika Media Capto tidak menawarkan selektivitas mengikat diperlukan. Rata-rata ukuran bead 90 pM.
  3. Akhirnya, tantangan yang berkaitan dengan polishing mungkin memerlukan manik-manik kecil untuk mencapai resolusi tinggi, seperti yang ditawarkan oleh media yang Sepharose High Performance. Rata-rata manik ukuran 34 m.
http://www.gelifesciences.com/file_source/GELS/Products%20%28Technologies%29/Technology%20Insights/Chromatography/Hydrophobic%20Interaction%20Chromatography%20%28HIC%29/HIC%20selection%20guide.jpg
3. Size Exclusion Chromatography
Pemisahan berbagai konstituen dengan meninjau perbedaan ukuran dan geometri molekul adalah dasar kromatografi eksklusi. Perbedaan ukuran menyebabkan beberapa partikel bergerak lebih  cepat dari  yang  lainnya sehingga  menimbulkan  perbedaan permukaan  migrasi. Kromatografi eksklusi dapat dikelompokkan dalam tiga kategori :
a. Kromatografi permeasi gel atau filtrasi gel
Filtrasi  gel  adalah  suatu  teknik  yang  menguraikan  campuran  zat-zat  sesuai  dengan ukuran  molekulnya.  Teknik  ini  didasarkan atas  inklusi  dan  eksklusi  suatu  zat  terlarut melalui  suatu  fase  diam  yang  terbuat  dari  gel  polimer  yang  berikat  silang  dan  berpori heterogen. Dalam kromatografi elusi cair-padat, pemisahan terjadi antara fase cair di dalam partikel gel dan cairan di luar yang mengelilingi partikel gel. Akibat mekanisme perbedaan laju  permeasi  masing-masing  molekul  zat  terlarut  dari  dan  ke  interior  partikel  gel, pemisahan akan terjadi. Dengan aliran cairan, molekul akan berdifusi ke seluruh bagian gel, hanya  molekul  yang  mempunyai  ukuran  besar  yang  tidak  dapat  masuk  ke  daerah  yang merupakan  rongga-rongga  gel.  Akibatnya  molekul  dapat  lewat  dengan  tanpa  rintangan sepanjang  kolom  melalui  interstisi  volume  cairan,  sedangkan  molekul  kecil akan terpenetrasi  secara  dalam  pada  celah-celah  gel.  Sudah  tentu  molekul-molekul  besar  akan terelusi  lebih  dahulu  baru  kemudian  diikuti  oleh  molekul -molekul  lebih  kecil  yang diperosokkan  dulu  ke  dalam  rongga-rongga  gel.  Pemisahkan  ini  dimungkinkan  akibat penahanan ukuran yang terjadi dalam partikel gel (Khopkar, 1990).
Pemisahan suatu tipe gel tertentu sangat tergantung pada ukuran molekul dan sifatsifat kimia dari zat yang akan dipisahkan. Misalnya pada biogel 0-10 digunakan untuk zatzat  yang  mempunyai  berat  molekul  yang  berkisar  antara  5000-17000  satuan.  Molekul dengan berat molekul di atas $batas ini yaitu limit eksklusi, akan lewat saja tanpa rintangan dari gel. Di bawah limit eksklusi, zat tersebut akan terelusi pada volume elusi yang sesuai dengan volume bed total. Untuk bekerja dalam medium  yang tidak berair, gel  yang tepat digunakan adalah Sephadex LH-20 (Khopkar, 1990).
b. Eksklusi dan retardasi ion
Eksklusi  Ion adalah  suatu  proses  untuk  memisahkan  materi  ionik  dari  materi nonionik didasari pada perbedaan distribusi kedua tipe zat pelarut ini di antara fase resin penukar ion dan larutan air. Suatu resin penukar ion tidaklah sama dengan absorbsi biasa. Dengan  mengatur  jaringan  muatan  suatu  resin,  dapat  diperoleh  suatu  keadaan  di  mana hanya satu macam ion elektrolit yang dieksklusikan. Jumlah total elektrolit yang berdifusi ke  dalam  resin  dibatasi  oleh  prinsip  elektronetralitas.  Makin  kuat  terionisasi  suatu  resin penukar makin efisien untuk eksklusi ion. Banyaknya garam yang berdifusi ke dalam resin berkurang dengan bertambahnya kapasitasnya penukar ion suatu resin. Sebagian besar ion elektrolit berberat  molekul rendah  yang  mudah larut dalam  air, bebas berdifusi ke dalam dan  ke  luar  resin  tidak  peduli  dengan  besarnya  kapasitas  resin,  sehingga  cenderung berkonsentrasi  sama  pada  kedua  fase  pada  saat  kesetimbangan  tercapai.  Selama  ada perbedaan koefisien distribusi untuk berbagai zat terlarut, maka pemisahan mungkin akan terjadi (Khopkar, 1990).
6.PNG
Retardasi  ion adalah  suatu  metode  pemisahan  dengan  kolom  yang  sangat  mirip dengan eksklusi ion tetapi menggunakan suatu resin penukar ion yang terdiri dari gugusan fungsi  kation  maupun anion dalam matriks resin. Resin akan  mengadsorbsi kation-kation dan anion-anion dari larutan sampel. Afinitas absorbsi tersebut rendah sehingga air dapat digunakan  untuk  meregenerasi  resin.  Jadi  perbedaannya  dengan  eksklusi  ion  adalah  pada retardasi ion-ion juga dihambat lajunya selama mengalir sepanjang kolom, serta retardasi ion  dapat  digunakan  untuk  pemisahan  elektrolit  dari  nonelektrolit  yang  berukuran  besar, dan  juga  elektrolit  dari  elektrolit  lain  jika  tetapan  distribusinya  cukup  berbeda,  misalkan NH4OH + NaOH; NH4Cl + ZnCl2; FeSO4 + ZnSO4 dapat dipisahkan dengan mudah dengan proses retardasi ion (Khopkar, 1990).
c. Molecular Sieve Anorganic – Zeolit
Zeolit alam dan sintesis membentuk suatu saringan molekul untuk pemisahan gas-gas dan  molekul  organik  berukuran  kecil.  Volume  suatu  zeolit  terbentuk  dari  suatu  rongga rongga  yang  saling  dihubungkan  oleh  saluran saluran  (channels).  Penyaringan  dan  aksi penghambatan  dari  saluran  dikombinasikan  dengan  aktivitas  adsorpsi  permukaan  matriks kristal sehingga memungkinkan digunakannya zeolit untuk memisahkan molekul-molekul yang  lebih  kecil  dari  ukuran  saluran  ini  dari  molekul  yang  lebih  besar  ukurannya  dari saluran.  Aktivitas  permukaan  dan  geometris  molekular  berperan  dalam  pemisahan  ini (Khopkar, 1990).
Secara struktural  zeolit adalah  rangka  tetrahedral  yang  bersatu  membentuk  struktur sarang  tawon  dengan  rongga-rongga  besar  yang  saling  berhubungan  melalui  saluransaluran kecil. Penampang lintang dari saluran inilah yang menentukan ukuran molekul yang dapat  masuk  ke  dalam  rongga-rongga.  Ukuran  dari  posisi  ion  logam  (misalkan  Na,  Ca) dalam  kristal  zeolit,  dan  tipe  struktur jaringan  rangka  tetrahedral  alumina  silikat  zeolit menentukan diameter efektif dari saluran-saluran tersebut (Khopkar, 1990).
Terdapat  bermacam  tipe  zeolit,  misalkan  tipe  molekular sieve 4Å  adalah [Na12(AlO2)12(SiO2)12].  Molekul  berdiameter  lebih  kecil  dari  4Å  j=ajab  teradsorbsi, misalkan  H2O,  CO2,  H2S,  SO2 dan  hidrokarbon  dengan  1-2  atom  karbon.  Etana  dapat masuk  dalam  molekular  sieve  5Å,  yang  dibuat  dari  molekular  sieve  4Å  dengan menggantikan Na oleh Ca dan K. Parafin rantai lurus dapat masuk ke dalamnya, demikian juga alkohol sampai dengan C4, tetapi siklopropana tidak dapat masuk, demikian juga asam naftanik dan molekul aromatik lainnya. Tipe 10 dan 13 adalah [Na8(AlO2)80(SiO2)106]. Senyawa ini mengadsorbsi molekul berdiameter sampai 10Å (Khopkar, 1990).
Molekular sieve mempunyai  afinitas  yang  lebih besar  terhadap  molekul  polar  dan senyawa  yang terpolarisasi karena induksi pada molekul non polar yang berukuran sama. Molekul-molekul  polar  tertahan  dengan  kuat  dalam  rongga  kristal.  Pada  pemurnian  dan industri gas, molekul sieve digunakan untuk menghilangkan molekul-molekul tidak jenuh (polar).  Zeolit  diguankan  juga  sebagai  medium  berlangsungnya  reaksi.  Bahan  kimia  di dalamnya  sebagai  hasil  reaksi  dapat  dikeluarkan  dengan  teknik  vakum  atau  dengan penggeseran menggunakan materi yang teradsorbsi kuat, misalkan air. Molekular sieve ini
dapat  diaktifkan  kembali  dengan  pemanasan  200-350o
C.  Mereka  juga  digunakan  dalam
7.PNGkromatografi gas padat sebagai fase diamnya dalam kolom (Khopkar, 1990).  



Schematic of molecular sieve membrane for separating hydrogen from mixed gas streams.


II. KOLOM
Kolom eksklusi mengandung partikel berpori dengan garis tengah pori yang berbeda. Solutyang disuntikkan ke dalam kolom akan berdifusi ke dalam pori yang garis tengahnya lebih besar daripada garis tengah efektif solut. Garis tengah efektif ditunjukkan pada gambar berikut :
8.PNG
(Khopkar, 1990).
Perhatikan, walaupun bobot molekul sama, garis tengah efektifnya berbeda, dan komponen yang garis  tengah  efektifnya  paling  besar  terelusi  lebih  dahulu. Selain  itu,  garis  tengah  efektif mencakup pula molekul solvasi apa saja (Khopkar, 1990).
Dengan bertambah besarnya garis tengah efektif solut, jumlah pori yang dapat dimasukinya dan kemampuannya berdifusi ke dalam pori menurun. Jadi, jika solut bergaris tengah demikian rupa  sehingga  tidak  dapat  berdifusi  ke  dalam  pori  yang  mana  pun,  maka solut tersebut  dapat dikatakan dieksklusi sempurna dan tidak ditahan, artinya solut itu terelusi dalam volum mati (Vo) kolom. Solut yang  mampu  berdifusi  sempurna  ke  dalam  semua  pori  dikatakan  berpermerasi sempurna  ke dalam  kemasan. Solut jenis  ini  memerlukan  volum  pelarut  yang  jauh  lebih  besar untuk mengelusinya dari kolom. Pemisahan komponen dapat tercapai jika komponen itu terelusi dengan volum tambat antara Vo dan volum permeasi total (Khopkar, 1990).
Volum kolom eksklusi terdiri atas tiga komponen yang jelas, yaitu :
1. volum mati, Vo – volum ruang antarpartikel yang ditepati fase gerak yang mengalir,
2. volum yang ditempati oleh bagian padat kemasan,
3. volum pori (Vp) – volum yang ditempati fase gerak yang mandek. Pada kromatografi eksklusi, ini dapat disamakan dengan volum fase diam (Khopkar, 1990).
Kita  dapat  mendefinisikan  koefisien  distribusi  K solut sebagai  nisbah  volum  pori  yang dapat dimasuki solut (Va) dan volum pori total (Vp), yaitu:
K=Maka volum tambat (Vr) solut dinyatakan dengan persamaan berikut : Vr = Vo + KVp Rentang K antara 0 sampai 1, karena jika solut dieksklusikan seluruhnya, maka K= 0, dan jika solut berpermerasi ke pori seluruhnya, maka K=1 (artinya, V a = Vp jika kolom berperilaku secara eksklusi ’ideal’ (Khopkar, 1990).
Maka  jelaslah  bahwa  untuk  memperoleh  pemisahan  semaksimum  mungkin  kita menginginkan volum mati yang kecil dan volum pori yang besar. Harus diingat pula bahwa untuk sistem  tertentu,  volum  yang  diperlukan  untuk  mengelusi  semua  komponen  cuplikan  besarnya tertentu (artinya Vo dan V p ). Jadi,harus dilakukan segala usaha untuk meminimumkan pelebaran pita (Khopkar, 1990).
Memilih ukuran pori kemasan umumnya bergantung pada ukuran molekul solut yang akan dipisahkan. Sering cuplikan ukurannya sangat beragam (artinya bobot molekul sangat berbedabeda) dan kemasan dengan satu ukuran pori saja tidak memadai untuk memisahkan semua jenis molekul.  Beberapa  mungkin  dieksklusi  seluruhnya  dari  pori  (K=0)  dan  terelusi  sabagai  satu puncak  dengan  volum  mati  (Vo),  sedangkan  yang  lain  berpermeasi  ke semua  pori  (K=1)  dan terelusi  sebagai  satu  puncak  dengan  volum  permeasi  total  (Vo+Vp).  Yang  lainnya  lagi berpermeasi ke pori secara selektif, bergantung pada ukuran nisbinya, dan terelusi dengan volum tambat Vr yang dinyatakan oleh persamaan Vr = Vo + KVp ini ditunjukkan berupa bagan dalam
gambar :
9.PNG
DETEKTOR
Dalam  SEC,  konsentrasi  dari  berat  polimer  dalam  eluen  mungkin  dapat  dipantau  terusmenerus  dengan  sebuah  detektor.  Ada  banyak  macam  detektor  yang  tersedia  dan  dapat  dibagi menjadi  dua  kategori.  Yang  pertama  adalah  konsentrasi  detektor  sensitif  meliputi  serapan  UV, indeks refraktometer diferensial (DRI) atau indeks bias (RI) detektor, inframerah (IR) penyerapan dan kepadatan detektor. BM-sensitif detektor termasuk detektor cahaya hamburan sudut rendah (LALLS), multi-sudut hamburan cahaya (MALL). Kromatogram yang dihasilkan oleh distribusi berat polimer sebagai fungsi volume retensi (Trathnigg, 1995). Detektor  yang  paling  sensitif  adalah  diferensial  fotometer  UV  dan  detektor  yang  paling umum  adalah  refraktometer diferensial  (DRI).  Ketika  karakterisasi  kopolimer,  perlu  untuk memiliki dua detektor dalam rangkaian. Untuk penentuan komposisi akurat kopolimer setidaknya dua  dari  detektor  tersebut  harus detektor  konsentrasi (Sandler, 1998).
Penentuan  komposisi kopolimer yang  paling  dilakukan  dengan  menggunakan  detektor  UV  dan  RI,  meskipun kombinasi lain dapat digunakan (Pasch, 2000).
1. Refraktor diferensial

10.PNGDetektor indeks  bias  dibangun  sebagai  aliran melalui refraktometer  diferensial  yang  terus  menerus  mengukur perbedaan indeks  bias  eluat  dan  eluen  murni.   menunjukkan skema jalur sinar melalui instrumen. Cahaya  yang  dipancarkan  dari  1  melewati  celah  LED  2 sebelum  dibelokkan  oleh  cermin  semi-transparan  3  dan melintasi  dua  bagian  dari  sel,  mengukur  4  cermin  semitransparan 3, dan sejajar bidang pelat kaca 6. Akhirnya, sinar dibagi  menjadi  dua  parsial  balok  oleh  prisma 7.  Intensitas dari balok di 8a, 8b yang menggunakan foto dioda dan digunakan sebagai ukuran untuk posisi sinar asli.
11.PNG
(Limanto, 2011).




DAFTAR PUSTAKA
Limanto, Kenny R., Bernadetta Arum W., Rachelia Octavia, Jenny Marina, Ina Juni A., Kristina Nety. 2011. Size Exclusion Chromatography. Yogyakarta : Universitas Sanata Dharma.

Khopkar, S.M..1990. Konsep Dasar Kimia Analitik. Jakarta: UI Press.

Posting Lebih Baru Posting Lama Beranda

0 komentar:

Posting Komentar